tests bij verschillende fréquenties voor de detectie van SARS-CoV-2-infecties
Het schatten van de effectiviteit van routinematige asymptomatische PCR-tests bij verschillende fréquenties voor de detectie van SARS-CoV-2-infecties
Contexte : Des checks asymptomatiques de routine utilisant la RT-PCR sur des personnes qui interagissent avec des populations vulnérables, telles que le personnel médical dans les hôpitaux ou les soignants dans les maisons de soins, ont été utilisés pour aider à prévenir les épidémies parmi les populations vulnérables. Bien que la sensibilité maximale de la RT-PCR puisse être élevée, la probabilité de détecter une an infection variera tout au lengthy de l’an infection. L’efficacité des checks asymptomatiques de routine dépendra donc de la fréquence des checks et de la façon dont la détection par PCR varie dans le temps.
Méthodes : Nous avons adapté un modèle statistique bayésien à un ensemble de données de checks PCR bihebdomadaires de travailleurs de la santé britanniques effectués par écouvillonnage nasopharyngé auto- administré , quels que soient les symptômes. Nous avons estimé conjointement les temps d’an infection et la probabilité d’un check PCR positif au fil du temps après l’an infection ; nous avons ensuite comparé les stratégies de dépistage asymptomatique en calculant la probabilité qu’une an infection symptomatique soit détectée avant l’apparition des symptômes et la probabilité qu’une an infection asymptomatique soit détectée dans les 7 jours suivant l’an infection.
Résultats : Nous avons estimé que la probabilité que le check PCR détecte une an infection a culminé à 77 % (54-88 %) four jours après l’an infection, diminuant à 50 % (38-65 %) 10 jours après l’an infection. Nos résultats suggèrent une probabilité sensiblement plus élevée de détecter les infections 1 à three jours après l’an infection que les estimations publiées précédemment. Nous avons estimé que des checks tous les deux jours détecteraient 57 % (33-76 %) des cas symptomatiques avant l’apparition et 94 % (75-99 %) des cas asymptomatiques dans les 7 jours si les résultats des checks étaient renvoyés dans la journée.
Conclusions : Nos résultats suggèrent que les checks asymptomatiques de routine peuvent permettre la détection d’une forte proportion d’individus infectés au début de leur an infection, à situation que les checks soient fréquents et que le délai entre le check et la notification des résultats soit suffisamment rapide.
Kwantitatieve meting van het aantal kopieën van transposon met behulp van de Droplet Digital PCR
La prolifération spontanée d’éléments transposables contribue à la diversité génétique à divers niveaux tels que le mosaïcisme somatique, la divergence génétique dans la inhabitants et l’évolution du génome. Une telle diversité génétique est essentielle pour l’adaptation des plantes à un environnement changeant et constitue une ressource précieuse pour l’amélioration des cultures. Par conséquent, mesurer la variation du nombre de copies des éléments transposables avec précision et efficacité est necessary pour comprendre l’étendue de leur prolifération.
Droplet Digital PCR (ddPCR) est une method précise et wise qui permet de mesurer la variation du nombre de copies d’un transposon. En bref, l’ADN génomique est extrait, digéré et divisé en milliers de gouttelettes à l’échelle du nanolitre. La PCR en temps réel TaqMan suivie de la détection par fluorescence du level remaining permet la mesure quantitative du nombre de copies d’ADN matrices. Ici, dans ce chapitre, nous décrivons la procédure étape par étape de la ddPCR en utilisant le rétrotransposon EVADE d’Arabidopsis comme exemple.
Vergelijking van computertomografie (CT) bevindingen rencontré RT-PCR bij de diagnostiquer COVID-19 bij kinderen
Objectif : Cette étude visait à comparer les résultats de la tomodensitométrie (TDM) thoracique avec les résultats des checks de réaction en chaîne par polymérase par transcription inverse (RT-PCR) chez les enfants avec un diagnostic possible ou définitif de maladie à coronavirus 2019 (COVID-19).
Méthodes : Dans cette étude d’archives rétrospective, les sufferers pédiatriques qui ont été suivis à l’hôpital avec un diagnostic doable ou définitif de COVID-19 et qui ont subi une tomodensitométrie thoracique lors de la présentation ont été inclus. Les photos tomodensitométriques des sufferers ont été réinterprétées par un radiologue pédiatrique et comparées aux résultats de leurs checks RT-PCR.
Résultats : Sur un complete de 89 sufferers, 33 avaient des checks RT-PCR négatifs et 56 positifs . La présence de lésions pulmonaires et de consolidation était statistiquement significativement plus élevée dans le groupe RT-PCR négatif que dans le groupe RT-PCR positif (p = 0,037 et 0,001, respectivement). L’implication des lobes de 0 % à 25 % était plus élevée dans le groupe positif à la RT-PCR (p = 0,001), et les atteintes des lobes de 25 % à 50 % et de 50 à 75 % étaient significativement plus élevées dans le groupe négatif à la RT-PCR (p = 0,001 et 0,005, respectivement). L’atteinte centrale et périhilaire s’est avérée statistiquement significative dans le groupe RT-PCR négatif (p = 0,008 et 0,005, respectivement).
Conclusion : Les résultats de la tomodensitométrie thoracique peuvent fournir des indices pour prédire la positivité de la RT-PCR chez les enfants avec un diagnostic possible de COVID-19. Un pourcentage d’atteinte lobaire allant jusqu’à 25 % est une conclusion en faveur des sufferers avec un check RT-PCR positif, alors que 25 à 75 % d’atteinte lobaire, une atteinte centrale et périhilaire et une consolidation peuvent être interprétées en faveur des sufferers avec une RT-PCR négative. check.
Description: A polyclonal antibody against GPR12. Recognizes GPR12 from Human. This antibody is Unconjugated. Tested in the following application: WB, IF, ELISA;WB:1/500-1/2000.IF:1/200-1/1000.ELISA:1/5000
Description: A polyclonal antibody against GPR12. Recognizes GPR12 from Human. This antibody is Unconjugated. Tested in the following application: ELISA, WB, IHC, IF; Recommended dilution: WB:1:500-1:5000, IHC:1:20-1:200, IF:1:50-1:200
Description: A polyclonal antibody for detection of GPR12 from Human. This GPR12 antibody is for WB, IF, ELISA. It is affinity-purified from rabbit antiserum by affinity-chromatography using epitope-specific immunogenand is unconjugated. The antibody is produced in rabbit by using as an immunogen synthesized peptide derived from the N-terminal region of human GPR12 at AA rangle: 10-90
Description: A polyclonal antibody for detection of GPR12 from Human. This GPR12 antibody is for WB, IF, ELISA. It is affinity-purified from rabbit antiserum by affinity-chromatography using epitope-specific immunogenand is unconjugated. The antibody is produced in rabbit by using as an immunogen synthesized peptide derived from the N-terminal region of human GPR12 at AA rangle: 10-90
Description: A polyclonal antibody for detection of GPR12 from Human. This GPR12 antibody is for WB, IF, ELISA. It is affinity-purified from rabbit antiserum by affinity-chromatography using epitope-specific immunogenand is unconjugated. The antibody is produced in rabbit by using as an immunogen synthesized peptide derived from the N-terminal region of human GPR12 at AA rangle: 10-90
Description: A polyclonal antibody against GPR12. Recognizes GPR12 from Human. This antibody is HRP conjugated. Tested in the following application: ELISA
Description: A polyclonal antibody against GPR12. Recognizes GPR12 from Human. This antibody is FITC conjugated. Tested in the following application: ELISA
Description: A polyclonal antibody against GPR12. Recognizes GPR12 from Human. This antibody is Biotin conjugated. Tested in the following application: ELISA
Description: A polyclonal antibody raised in Rabbit that recognizes and binds to Human GPR12 (N-Terminus). This antibody is tested and proven to work in the following applications:
Description: A polyclonal antibody raised in Rabbit that recognizes and binds to Human GPR12 (Extracellular Domain). This antibody is tested and proven to work in the following applications:
Description: A polyclonal antibody raised in Rabbit that recognizes and binds to Human GPR12 - C-terminal region. This antibody is tested and proven to work in the following applications:
Positieve COVID19-PCR-patiënten as negatieve controles voor COVID19-antilichaamtests
Des checks d’anticorps sérologiques COVID-19 sont récemment nécessaires pour une évaluation relativement rapide, abordable et précieuse de l’immunité contre l’an infection COVID-19 . De plus, ils peuvent aider à évaluer la suffisance du processus de vaccination et sa longévité. Il existe des limites dans l’approche actuelle consistant à choisir les échantillons de contrôle positifs et négatifs pour la validation de ces checks. Ici, nous proposons l’utilisation d’échantillons de sang de sufferers positifs au COVID-19, au début de l’évolution de la maladie, comme échantillons sanguins de contrôle négatif pour les checks d’anticorps. Pour plus de précision, les échantillons de contrôle négatifs et positifs peuvent être obtenus à partir des mêmes sufferers où la précision du check dépendra de sa capacité à détecter la séroconversion, de la détection d’anticorps négative à optimistic, chez le même affected person.
De plus, lorsque la validation du check s’accompagne de la détection/séquençage du génome viral chez ces sufferers COVID-19 , cela peut également aider à déterminer la précision du check dans la détection de la réponse immunitaire à des variantes virales spécifiques. Cette dernière notion est nécessaire à la bonne gestion de la crise du COVID-19, à la fabrication de nouveaux vaccins et à l’ évaluation de l’efficacité des vaccins. Enfin, cette démarche pourra être demandée/formulée par les agences réglementaires dans le cadre de la validation des checks et pourra être obtenue « en interne » par les établissements de santé avant son utilisation clinique.
Een systematische evaluate et meta-analyse van ontslagen COVID-19-patiënten die opnieuw positief testen op RT-PCR
Contexte : Avec l’augmentation du nombre de sufferers sortis après avoir eu COVID-19 , de plus en plus d’études ont rapporté des cas dont le nouveau check était positif (RP) pendant la période de convalescence, ce qui pose un nouveau défi de santé publique au monde.
Méthodes : Nous avons effectué des recherches dans PubMed, Internet of Science, The Cochrane Library, CNKI, WanFang et VIP du 1er décembre 2019 au 31 décembre 2020 . Les études incluses ont été évaluées à l’aide des outils d’évaluation critique JBI et de l’échelle Newcastle-Ottawa. Le taux de RP des sufferers sortants a été analysé par une méta-analyse. Nous avons adhéré à la directive de déclaration PRISMA.
Résultats : Nous avons inclus 117 études avec 2669 members RP après la sortie. La qualité méthodologique de 66 rapports de cas était faible à élevée, 42 séries de cas et three études de cohorte étaient modérées à élevées, three études cas-témoins étaient modérées et three études transversales étaient faibles à modérées. Les manifestations cliniques de la plupart des sufferers atteints de PR étaient légères ou asymptomatiques, et l’imagerie CT et les examens de laboratoire étaient généralement normaux. Les facteurs de risque existants suggèrent qu’une plus grande consideration devrait être accordée aux sufferers sévères, aux sufferers âgés et aux sufferers présentant des comorbidités. Le taux de RP résumé était de 12,2 % (IC à 95 % 10,6-13,7) avec une forte hétérogénéité ( I 2 = 85 %).
Interprétation : À ce jour, les causes et les facteurs de risque du résultat de la RP chez les sufferers sortants ne sont pas entièrement compris. Des études étiologiques et cliniques de haute qualité sont nécessaires pour étudier ces problèmes afin de nous aider davantage à élaborer des stratégies pour contrôler et prévenir son apparition.
